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Fl6000 medidor de fluorescencia de clorofila de doble modulación
Fl6000 medidor de fluorescencia de clorofila de doble modulación
Detalles del producto

FL6000Medidor de fluorescencia de clorofila de doble modulación

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FL6000El fluorescente de clorofila de doble modulación es la última versión actualizada del fluorescente de clorofila de doble modulación fl3500, que se utiliza especialmente como una poderosa herramienta de investigación científica para el estudio en profundidad del mecanismo de fotosíntesis de microalgas, cloroplastos o suspensiones de tilacoides como cianobacterias o algas verdes. El instrumento cuenta con un control de medición de dos canales, que puede controlar la temperatura de las muestras de medición, y está equipado con una luz de volteo único (stf), con una variedad de programas de medición incorporados que los usuarios pueden modificar por sí mismos, lo que puede llevar a cabo diversos estudios internacionales en profundidad sobre los mecanismos actuales de fluorescencia de clorofila. Su estructura central es una cabeza de medición óptica que contiene una taza de muestra estándar de suspensión, con tres grupos de fuentes de Luz LED incorporadas y un detector de señal de diodos pin de conversión ad de 1 MHz / 16 bits. La ganancia y el tiempo de integración de la conversión ad se pueden controlar a través del software. La resolución temporal del detector para medir la señal de fluorescencia de clorofila puede ser tan alta como 4 micras (la versión rápida es de 1 micras).

Áreas de aplicación:

·Selección de las características fotosintéticas y los trastornos metabólicos de las plantas

·Detección de coacciones biológicas y abióticas

·Estudio sobre la resistencia o susceptibilidad de las plantas al estrés

·Estudio sobre el caos metabólico

·Estudio sobre el mecanismo de trabajo del sistema fotosintético

·Estudio sobre las estrategias de respuesta fisiológica fotosintética de las plantas estresadas

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Muestras típicas:

·Cianobacterias (cianobacterias)

·Algas verdes

·Suspensión de cloroplastos

·Suspensión de tilacoides

·Fragmentos vegetales

Características funcionales:

·La medición integrada de inducción de fluorescencia de clorofila, la medición de Pam (modulación de pulso), la medición de dinámica de fluorescencia rápida ojip, la dinámica de reoxidación qa, la conversión del Estado s, el apagado de fluorescencia de clorofila y otros procedimientos de medición son los fluorescentes de clorofila más completos reconocidos en el mundo.

·Tecnología de doble modulación, que puede modular la luz de medición en dos colores, tiene luz fotoquímica modular y luz fotoquímica continua, y puede realizar mediciones de STF (flash de rotación única), TTF (flash de rotación doble) y MTF (flash de rotación múltiple) y tecnología frr personalizada (fast repetition gate).

·La resolución temporal de la versión estándar es de 4 micras, la versión rápidaHasta 1 μs, es el medidor de fluorescencia de clorofila con la resolución temporal más alta en la actualidad.

·La unidad de control es de doble canal, que se puede conectar con el sensor de temperatura para el control de temperatura, la unidad de medición de oxígeno para la medición de la reacción de hill, etc.

·Con una sensibilidad extremadamente alta, el límite mínimo de detección es de 100 ng chla / L

·La luz de medición, la luz fotoquímica y la fuente de luz de conversión de inversión única saturada pueden personalizar el color y la intensidad.

·La máquina principal está equipada con una pantalla táctil de color para ver el gráfico de fluorescencia en tiempo real.

Parámetros técnicos:

·Procedimiento experimental: medición del efecto de inducción de la fluorescencia clorofila de kautsky; PAM (modulación de pulso)Dinámica de extinción por fluorescenciaMedición; Medición de la dinámica de fluorescencia rápida de ojip; Qa - cinética de reoxidación; Conversión del Estado s; Inducción rápida de fluorescencia de clorofila

  • Parámetros de fluorescencia:

uPAMMedición de la dinámica de enfriamiento por fluorescencia: se mide la curva dinámica de enfriamiento por fluorescencia y se puede calcular F0Fm, Fv y F.0Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRY más de 50 parámetros de fluorescencia de clorofila;

uOJIPMedición de la dinámica de fluorescencia rápida: medición de la curva de dinámica de fluorescencia rápida de ojip, se puede calcular F0FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F0FV y F0Fv / Fm, M0, Área, Área fija, SM, SS, N, Phi_P0y Psi_0El Phi_E0El Phi_D0Phi_Pav, ABS / RC, TR0/ RCy ET0/ RCy DI0/ RCY más de 20 parámetros relacionados;

ucalidad- cinética de reoxidación (qa - cinética de reoxidación): medición de la curva dinámica de Qa - reoxidación para ajustarse a las amplitudes (a1, a2, a3) y constantes de tiempo (t1, t2, t3) de fase rápida, fase intermedia y fase lenta (slow) durante el proceso de reoxidación de Qa

uSConversión de Estado (prueba de Estado s): medición de la curva de atenuación de fluorescencia de la prueba de Estado s para ajustar y calcular el sistema de luz inactivo II (psii)X) número de centros de reacción

uInducción de fluorescencia Flash (introducción de fluorescencia flash, ffl, solo versión rápida): se utiliza para ajustar y calcular el área efectiva de la antena, conectividad de la antena, etc.

uProporciona la función de protocolo personalizada por el usuario para lograr la heterogeneidad de la antena psii psiiαCon el psiiβAnálisis, área transversal de antena efectiva psii..sPSIIMedición de otros parámetros (selección de funciones personalizadas)

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ucalidad– curvas cinéticas de reoxidación yPrueba de estado SCurva de atenuación de fluorescenciaLi2010(...)

·Resolución temporal (frecuencia de muestreo): detector de alta sensibilidad, resolución temporal estándar de 4 micras, versión rápida de 1 micras

·Límite mínimo de detección: versión estándar 100ng chla / l, versión rápida 1 μg chla / L

·Unidad de control: equipada con una pantalla táctil de color para ver el gráfico de fluorescencia en tiempo real

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·Sala de medición:

oMedición del flash: 623 nm de luz roja y naranja y 460 nm de luz azul, tiempo de Flash 2 - 5 micras s

oFlash saturado de rotación única: la intensidad máxima de la luz es de 170000 μmol (photons) / mm2.s, y el tiempo de flash es de 20 - 50 μs.

oLuz fotoquímica continua: Intensidad máxima de luz 3500 μmol (photons) / M m2.s

oDetector de fluorescencia: Fotodetector Pin

oADConvertidor: 16 bits

oTubo de muestra: área inferior 10 × 10 mm, volumen 4 ml

  • Sala de medición personalizada (opcional): se pueden personalizar la luz de medición, el flash saturado y el color de la luz fotoquímica (azul, azul, ámbar, etc.) y la banda de detección (chla, chlb)

  • Fuente de luz infrarroja lejana (opcional): para medir F0', longitud de onda 730 nm

·Módulo de medición de oxígeno (opcional): medición de la liberación de oxígeno de las algas

·Control de temperatura (opcional): regulador de temperatura tr6000, rango de control de temperatura 5 - 60 ° c, precisión 0,1 ° C

  • Agitación electromagnética (opcional): para mezclar las muestras, evitar la precipitación de las muestras, se puede ajustar manualmente la velocidad o controlar automáticamente con software

  • Interfaz de comunicación: puerto serie RS232 / USB

FluorWinSoftware: definir o crear esquemas experimentales, configuración de control de fuentes de luz, salida de datos, procesamiento de análisis y visualización de gráficos

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Aplicaciones típicas:

1. El investigador Wang Qiang del Instituto de biología acuática de la Academia China de Ciencias utilizó el fluorescente de clorofila fl3500 (modelo anterior a fl6000) y el sistema de Termoluminiscencia vegetal TL para demostrar que el estrés por nitrito afectó primero al lado receptor psii de synechocystis sp. PCC 6803 (zhan x, et al, 2017). El estudio de este mecanismo profundo de fotosíntesis a menudo requiere la cooperación de estos dos instrumentos.

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2.El investigador pan xiangliang del Instituto de Ecología y geografía de Xinjiang de la Academia China de Ciencias y su Grupo de investigación utilizaron el fluorescente de clorofila fl3500 (modelo anterior a fl6000) para llevar a cabo investigaciones toxicológicas en profundidad sobre algas de metales pesados, sales, compuestos tóxicos, herbicidas, pesticidas, antibióticos y otras sustancias nocivas en el medio ambiente. A través de los procedimientos únicos de medición de fluorescencia de clorofila, como la medición de la dinámica de fluorescencia rápida ojip de alta resolución, la dinámica de reoxidación QA y la conversión del Estado S de fl3500, se revelan exhaustivamente los mecanismos toxicológicos y sus efectos ecológicos de las diferentes concentraciones y tiempos de tratamiento que causan daños al sistema fotosintético de algas. En la actualidad, el Grupo de investigación pan xiangliang ha publicado más de 20 artículos de alto nivel en revistas SCI internacionales y revistas nacionales básicas utilizando fl3500 (modelos anteriores a fl6000).

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Origen: República Checa

Referencias:

1. Manaa A, et al. 2019. Tolerancia a la salinidad de la quinoa (Quinoa de ChenopodiumWilld) según se evalúa por la ultraestructura del cloroplasto y el rendimiento fotosintético. Botánica Ambiental y Experimental 162: 103-114

2. Yu Z, et al. 2019. La sensibilidad de Chlamydomonas reinhardtii al estrés de cadmio se asocia con la fototaxis. Ciencias Ambientales: Procesos e Impactos 21: 1011-1020

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4. Orfanidis S, et al. 2019. Resolver la eutrofización de cianobacterias a través de la biotecnología. Ciencias Aplicadas 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Regulación de la función PSII encianotecaATCC 51142 durante un ciclo luz-oscuridad. Investigación de fotosíntesis 139(1–3): 461–473

6. Smythers A L, et al. 2019. Caracterizar el efecto de Poast enChlorella vulgarisun organismo no objetivo. Químosfera 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Modulación del proteoma tilocoide en plantas de guisantes cultivadas a diferentes irradiancias: perfilado proteómico cuantitativo en unaorganismo modelo ayudado por la integración de datos transcriptómicos. El diario de plantas 96(4): 786-800

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9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018. Simulación de la cinética del aumento y la decadencia de la fluorescencia de la clorofila, y los cambios de absorbancia relacionados con P700 mediante el uso de un método de Monte-Carlo cinético basado en reglas. Investigación de fotosíntesis. DOI: 10.1007/s11120-018-0564-2

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11.Bonisteel E M, et al. 2018. Las diferencias específicas de cepa en las tasas de reparación del fotosistema II en picocianobacterias se correlacionan con las diferencias en los niveles de proteína FtsH y los patrones de expresión de isoformas. PLoS ONE 13(12): e0209115.

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